Prostaglandina E2 induz ovulação em camundongos pré-púberes

Autores

  • Jéssica de Souza Andrade Rede Bionorte, Programa de Pós-graduação em Biodiversidade e Biotecnologia
  • Juliana Pavan Zuliani Fundação Oswaldo Cruz de Rondônia, Laboratório de Imunologia Aplicada à Saúde
  • Jaswant Singh University of Saskatchewan, Veterinary Biomedical Sciences
  • Sulamita da Silva Setúbal Fundação Oswaldo Cruz de Rondônia, Laboratório de Imunologia Aplicada à Saúde
  • Renata Reis da Silva Empresa Brasileira de Pesquisa Agropecuária
  • Augusto Schneider Universidade Federal de Pelotas
  • Luiz Francisco Machado Pfeifer Empresa Brasileira de Pesquisa Agropecuária https://orcid.org/0000-0003-2069-951X

DOI:

https://doi.org/10.11606/issn.1678-4456.bjvras.2021.182745

Palavras-chave:

Ovulação, Prostaglandina, Receptor, Puberdade

Resumo

O objetivo deste estudo foi determinar a capacidade da prostaglandina E2 (PGE2) em induzir a ovulação e expressão do receptor PGE2 (EP2 e EP4) e genes COX (COX-1 e COX-2) no ovário e na hipófise de camundongos pré-púberes. O controle positivo consistiu na aplicação de 5 μg de hormônio liberador de gonadotrofina (GnRH, n = 29); o controle negativo aplicação 0,5 mL de tampão fosfato-salino (PBS, n=31); o tratamento testado aplicação de 250 μg de PGE2 (n = 29), perfazendo um total de 89 camundongos (BALB/c) pré-púberes. Os camundongos foram sacrificados 14 a 15 h após os tratamentos para detectar ovulações e coleta de tecido. O teste do qui-quadrado foi usado para comparar a proporção de animais ovulando. As expressões gênicas e o número de ovulação foram analisados por ANOVA e o teste de tukey foi usado para comparar as médias entre os grupos. Uma maior proporção de camundongos (P <0,001) ovulou após receber GnRH (89,7%, 26/29) em comparação com o grupo PGE2 (58,6%, 17/29). No entanto, a proporção foi maior em comparação com aqueles tratados com PBS (0%, 0/31). A expressão do gene Ep2 na hipófise foi duas vezes maior (P <0,05) no grupo PGE2 em comparação com os grupos PBS e GnRH. Além disso, a PGE2 estimulou a Cox1 (2,7 vezes, P <0,05) enquanto o GnRH estimulou a expressão de Cox2 (6,5 vezes, P <0,05) na pituitária em comparação com o grupo PBS. Em conclusão, nossos resultados suportam a hipótese de que PGE2 é capaz de induzir ovulação em camundongos pré-púberes com aumento concomitante na expressão dos genes Ep2 e Cox1 na glândula pituitária.

Downloads

Os dados de download ainda não estão disponíveis.

Referências

Ben-Ami I, Freimann S, Armon L, Dantes A, Strassburger D, Friedler S, Raziel A, Seger R, Ron-El R, Amsterdam A. PGE2 up-regulates EGF-like growth factor biosynthesis in human granulosa cells: new insights into the coordination between PGE2 and LH in ovulation. Mol Hum Reprod. 2006;12(10):593-9. http://dx.doi.org/10.1093/molehr/gal068. Pmid:16888076.

Bogle OA, Ratto MH, Adams GP. Evidence for the conservation of biological activity of ovulation-inducing factor in seminal plasma. Reproduction. 2011;142(2):277-83. http://dx.doi.org/10.1530/REP-11-0042. Pmid:21652637.

Clasadonte J, Poulain P, Hanchate NK, Corfas G, Ojeda SR, Prevot V. Prostaglandin E 2 release from astrocytes triggers gonadotropin-releasing hormone (GnRH) neuron firing via EP2 receptor activation. Proc Natl Acad Sci USA. 2011;108(38):16104-9. http://dx.doi.org/10.1073/pnas.1107533108. Pmid:21896757.

Espey LL. Ovarian contractility and its relationship to ovulation: a review. Biol Reprod. 1978;19(3):540-51. http://dx.doi.org/10.1095/biolreprod19.3.540. Pmid:31208.

Evans G, Dobias M, King GJ, Armstrong DT. Production of prostaglandins by porcine preovulatory follicular tissues and their roles in intrafollicular function. Biol Reprod. 1983;28(2):322-8. http://dx.doi.org/10.1095/biolreprod28.2.322. Pmid:6404317.

Fortune JE, Willis EL, Bridges PJ, Yang CS. The periovulatory period in cattle: progesterone, prostaglandins, oxytocin and ADAMTS proteases. Anim Reprod. 2009;6(1):60-71. PMid:20390049.

Li Q, Jimenez-Krassel F, Kobayashi Y, Ireland JJ, Smith GW. Effect of intrafollicular indomethacin injection on gonadotropin surge-induced expression of select extracellular matrix degrading enzymes and their inhibitors in bovine preovulatory follicles. Reproduction. 2006;131(3):533-43. http://dx.doi.org/10.1530/rep.1.00926. PMid:16514196.

Martínez-Boví R, Cuervo-Arango J. Follicle diameter and systemic hormone interrelationships during induction of follicle collapse with intrafollicular prostaglandin E2 and F2α in Mares. Reprod Domest Anim. 2016;51(2):322-9. http://dx.doi.org/10.1111/rda.12683. Pmid:26931199.

Murdoch WJ, Hansen TR, McPherson LA. A review - Role of eicosanoids in vertebrate ovulation. Prostaglandins. 1993;46(8):85-115. http://dx.doi.org/10.1016/0090-6980(93)90037-8. Pmid:8210447.

Myren M, Olesen J, Gupta S. Prostaglandin E 2 receptor expression in the rat trigeminal-vascular system and other brain structures involved in pain. Neurosci Lett. 2012;506(1):64-9. http://dx.doi.org/10.1016/j.neulet.2011.10.050. Pmid:22061836.

Naor Z, Jabbour HN, Naidich M, Pawson AJ, Morgan K, Battersby S, Millar MR, Brown P, Millar RP. Reciprocal cross talk between gonadotropin-releasing hormone (GnRH) and prostaglandin receptors regulates GnRH receptor expression and differential gonadotropin secretion. Mol Endocrinol. 2007;21(2):524-37. http://dx.doi.org/10.1210/me.2006-0253. Pmid:17138645.

Niringiyumukiza JD, Cai H, Xiang W. Prostaglandin E2 involvement in mammalian female fertility: ovulation, fertilization, embryo development and early implantation. Reprod Biol Endocrinol. 2018;16(1):43. http://dx.doi.org/10.1186/s12958-018-0359-5. Pmid:29716588.

Ojeda SR, Negro-Vilar A. Prostaglandin E2-induced luteinizing hormone-releasing hormone release involves mobilization of intracellular Ca+2. Endocrinology. 1985;116(5):1763-70. http://dx.doi.org/10.1210/endo-116-5-1763. Pmid:2985358.

Pfeifer LFM, de Souza Andrade J, Moreira EM, Reis da Silva R, Araújo Neves PM, Moreira da Silva G, Lemos IC, Schneider A. Uterine inflammation and fertility of beef cows subjected to timed AI at different days postpartum. Anim Reprod Sci. 2018;197:268-77. http://dx.doi.org/10.1016/j.anireprosci.2018.08.039. Pmid:30195943.

Randel RD, Lammoglia MA, Lewis AW, Neuendorff DA, Guthrie MJ. Exogenous PGF2α enhanced GnRH-induced LH release in postpartum cows. Theriogenology. 1996;45(3):643-54. http://dx.doi.org/10.1016/0093-691X(95)00410-A. Pmid:16727826.

Saksena SK, Lau IF, Shaikh AA. Cyclic changes in the uterine tissue content of F-prostaglandins and the role of prostaglandins in ovulation in mice. Fertil Steril. 1974;25(7):636-43. http://dx.doi.org/10.1016/S0015-0282(16)40521-2. Pmid:4858379.

Segi E, Haraguchi K, Sugimoto Y, Tsuji M, Tsunekawa H, Tamba S, Tsuboi K, Tanaka S, Ichikawa A. Expression of messenger RNA for prostaglandin E receptor subtypes EP4/EP2 and cyclooxygenase isozymes in mouse periovulatory follicles and oviducts during superovulation. Biol Reprod. 2003;68(3):804-11. http://dx.doi.org/10.1095/biolreprod.102.003590. Pmid:12604629.

Sirois J, Richards JS. Purification and characterization of a novel, distinct isoform of prostaglandin endoperoxide synthase induced by human chorionic gonadotropin in granulosa cells of rat preovulatory follicles. J Biol Chem. 1992;267(9):6382-8. http://dx.doi.org/10.1016/S0021-9258(18)42706-8. Pmid:1556140.

Sirois J, Simmons DL, Richards JS. Hormonal regulation of messenger ribonucleic acid encoding a novel isoform of prostaglandin endoperoxide H synthase in rat preovulatory follicles. Induction in vivo and in vitro. J Biol Chem. 1992;267(16):11586-92. http://dx.doi.org/10.1016/S0021-9258(19)49951-1. Pmid:1597485.

Tsafriri A, Lindner HR, Zor U, Lamprecht SA. Physiological role of prostaglandins in the induction of ovulation. Prostaglandins. 1972;2(1):1-10. http://dx.doi.org/10.1016/0090-6980(72)90024-X. Pmid:4579171.

Downloads

Publicado

2021-09-28

Edição

Seção

NOTA PRÉVIA

Como Citar

1.
Andrade J de S, Zuliani JP, Singh J, Setúbal S da S, Silva RR da, Schneider A, et al. Prostaglandina E2 induz ovulação em camundongos pré-púberes. Braz. J. Vet. Res. Anim. Sci. [Internet]. 28º de setembro de 2021 [citado 18º de maio de 2024];58:e182745. Disponível em: https://journals.usp.br/bjvras/article/view/182745